Consumo de oxigênio de Astyanax sp. em função da temperatura e condições de oxigenação
Resumo
Espécies que habitam ambientes de água doce são expostas a variações periódicas na disponibilidade de oxigênio e temperatura da água, refletindo os processos físicos, químicos e biológicos do ambiente. Estas variações podem interferir diretamente na distribuição da ictiofauna nestes ambientes. Neste contexto, as espécies de peixe são induzidas a desenvolver características morfológicas e fisiológicas como uma estratégia alternativa a estas variações ambientais. O presente estudo teve como objetivo avaliar o consumo de oxigênio por exemplares de Astyanax sp., expondo os indivíduos em dois tratamentos distintos de temperatura (22º C e 29º C). A temperatura apresentou uma influência sob o consumo de oxigênio dos indivíduos onde, em condições normais de oxigênio e temperatura mais baixa, os indivíduos consumiram de forma independente. Em contrapartida, no tratamento com a temperatura elevada, o consumo foi menor caracterizando uma forma de economia em função de um cenário limitado. Dessa forma, conclui-se que temperatura e oxigênio podem interagir para influenciar os mecanismos fisiológicos e adaptativos de organismos frente a situações adversas.
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Referências
Angilletta MJ, Niewairowski PH, Navas CA (2002) The evolution of termal physiology in ectotherms. Journal Thermal Biology 27: 249–268.
Arend, KK, Beletsky D, De Pinto JV, Ludsin SAJJ, Roberts DK, Rucinski D, Scavia DJ, Hook TO (2011) Seasonal and interannual effects of hypoxia on fish habitat quality in central Lake Erie. Freshwater Biology 56: 366–383.
Baldisserotto B (2002) Fisiologia de Peixes Aplicada à Piscicultura. Santa Maria, Ed. UFSM.
Brander KM (2007) Global fish production and climate change. Proceedings of the National Academic Sciences 104: 19709–19714.
Burleson ML, Silva PE (2011) Cross tolerance to environmental stressors: effects of hypoxic acclimation on cardiovascular responses of Channel catfish (Ictalurus punctatus) to a thermal challenge. Journal Thermal Biology 36: 250–254.
Cucco A, Sinerchia M, Lefrançois C, Magni P, Ghezzo M, Umgiesser G, Perilli A, Domenici P (2012) A metabolic scope based model of fish response to environmental changes. Ecological Modelling 237-238: 132–141.
Cunha VL, Rodrigues RV, Okamoto MH, Sampaio LA (2009) Consumo de oxigênio pós-prandial de juvenis do pampo (Trachinotus marginatus). Ciência Rural, Santa Maria 39: 1257–1259.
Danovaro R, Pusceddu A (2007) Biodiversity and ecosystem functioning in coastal lagoons: does microbial diversity play any role. Estuarine, Coastal and Shelf Science 75: 4–12.
Diaz RJ, Rosenberg R (2008) Spreading dead zone and consequences for marine ecosystems. Science 321: 926–929.
Domenici P, Claireaux G, McKenzie DJ (2007) Environmental constraints upon locomotion and predator-prey interactions in aquatic organisms. Philosophical Transactions of the Royal Society B 362(1487): 1929–1936.
Farrell AP (2002) Cardiorespiratory performance in salmonids during exercise at high temperature: insights into cardiovascular design limitations in fishes. Comparative Biochemical Physiology 132A: 797–810.
Fu SJ, Brauner CJ, Cao ZD, Richards JG, Peng JL, Dhillon R, Wang YX (2011) The effect of acclimation to hypoxia and sustained exercise on subsequent hypoxia tolerance and swimming performance in goldfish (Carassius auratus). Journal of Experimental Biology 214: 2080–2088.
Gomes LC, Golombienski J, Chippari-Gomes AR, Baldisserotto B )2000) Biologia do Jundiá Rhamdia quelen (Teleostei, Pimelodidae). Ciencia Rural, Santa Maria 30: 179–185.
Love JW, Rees BB (2002) Seasonal differences in hypoxia tolerance in gulf killifish (Fundulus grandis) (Fundulidae). Environmental Biology of Fishes 63: 103–115.
McDowall RM (1988) Diadromy in Fishes. London, Croom Helm.
Miller JM, Neill WH, Duchon KA, Ross SW (2000) Ecophysiological determinants of secundary production in salt marshes: a simulation study. In: Weinstein MP, Kreeger DA (ed) Concepts and Controversies in Tidal Marsh Ecology, pp 315–331.
Petersen LH, Gamperi AK (2011) Cod (Gadus morhua) cardiorespiratory physiology and hypoxia tolerance following acclimation to low-oxygen condictions. Physiology Biochemical Zoology 84: 18–31.
Portner HO, Knust R (2007) Climate change effects marine fishes through the oxygen limitation of thermal tolerance. Science 315: 95–97.
Portner HO, Farrel AP(2008) Physiology andclimatechange. Science 322: 690–692. Portner HO, Peck MA (2010) Climate change effects on fishes and fisheries: towards a cause-and-effect understanding. Journal of Fish Biology 77: 1745–1779.
Portner HO (2010) Oxygen-and capacity-limitation of thermal tolerance: a matrix for integrating climate-related stressor effects in marine ecosystems. Journal of Experimental Biology 213: 881–893.
Rosenzweig C, Karoly D, Vicarell M, Neofotis P, Wu Q, Casassa G, Menzel A, Root TL, Estrella N, Seguin B, Tryjanowski P, Liu C, Rawlins S, Imeson A (2008) Attributing physical and biological impacts to anthropogenic climate change. Nature 453: 353–357.
Sollid J, Weber RE, Nilsson GE (2005) Temperature alters the respiratory surface area of crucian carp (Carassius carassius) and goldfish (Carassius auratus). Journal of Experimental Biology 208: 1109–1116.
Wang Y, Hu M, Shin PKS, Cheung SG (2011) Immune responses to combined effect of hypoxia and high temperature in the green-lipped mussel Perna viridis. Marine Pollution Bulletin 63: 201–208.
Weber JM, Kramer DL (1983) Effects of hypoxia and surface access on growth, mortality, and behaviour of juvenile guppies (Poecilia reticulata). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences 40: 1583–1588.
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